Національна академія наук україни інститут фізіології ім. О. О. Богомольця



Сторінка6/8
Дата конвертації18.06.2017
Розмір1.34 Mb.
1   2   3   4   5   6   7   8
in vitro / А.П. Жамбалова, Ю.Г. Гершович, Л.Б. Буравкова, C.B. Гальчук, Ю.А. Романов // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. – 2009. –Т. 4, №3. – С. 47-51.

  • Зорина А.И. Дермальные фибробласты: разнообразие фенотипов и физиологических функций, роль в старении кожи / А.И. Зорина, В.Л. Зорин, В.Р. Черкасов // Эстетическая медицина. – 2012. – Т. 11, №1. – С. 15-31.

  • Зуева Н.Н. Свойства, получение и практическое применение щелочной фосфатазы / Н.Н. Зуева, П.Г. Далев, Д.Л. Лазарова // Биохимия. – 1993. – Т. 58, №7. – С. 1009-1022.

  • Казначеева А.И. Содержание свободных аминокислот у практически здоровых лиц в плазме крови, эритроцитах и моче / А.И. Казначеева, Н.З. Злыднев // Лаб. дело. – 1976. – №8. – С. 479-480.

  • Караев А.Л. Аминокислоты – основа жизни / А.Л. Караев // Профилактика заболеваний и укрепление здоровья. – 2008. – Т. 11, №3. – С. 37-39 .

  • Киселева Е.В. Сравнение дифференцировочных потенций фибробластоподобных клеток стромы костного мозга, жировой ткани, волосяного сосочка и фибробластов дермы человека / Е.В. Киселева, Э.С. Чермных, Е.А. Воротеляк, А.И. Воложин, А.В. Васильев, В.В. Терских // Цитология. – 2009. – Т. 51, №1. – С. 12-19.

  • Коваленко В.М. Дослідження впливу хондроїтину сульфату, глюкозаміну гідрохлориду та їх комбінації на культуру стовбурових стромальних клітин кісткового мозку людини / В.М. Коваленко, І.В. Лисенко, Л.М. Панченко // Український ревматологічний журнал. – 2007. – Т. 28, №2. – С. 51-55.

  • Коржов В.И. Монооксид углерода / В.И. Коржов, А.В. Видмаченко, М.В. Коржов // Журн. АМН Украины. – 2010. – Т. 16, №1. – С. 23-37.

  • Коробейникова Э.М. Определение содержания свободных аминокислот в сыворотке крови и моче здоровых детей / Э.М. Коробейникова, Г.В. Мещерякова // Лаб. дело. – 1981. – №4. – С. 221-224.

  • Кругляков П.В. Стволовые клетки дифференцированных тканей взрослого организма / П.В. Кругляков, И.Б. Соколова, Д.Г. Полынцев // Цитология – 2008. – Т. 50, №7. – С. 557-567.

  • Кушнірук В.О. Дослідження каріотипу нової лінії клітин людини 4BL6 при тривалому культивуванні in vitro / В.О. Кушнірук, Т.П. Кочубей, Л.Л. Мацевич, Т.П. Рубан, Л.Л. Лукаш // Фактори експериментальної еволюції організмів. – 2012. – Т. 3. – С. 313-318.

  • Кушнірук В.О. Морфологічні та ростові особливості нової лінії клітин людини 4BL / В.О. Кушнірук, Т.П. Рубан, Л.Л. Лукаш // Фактори експериментальної еволюції організмів . – 2013. – Т. 13. – С. 315-319.

  • Литовка И.Г. Органический матрикс в адаптации и ремоделировании костной ткани / И.Г. Литовка, В.А. Березовский. – Донецк: Издатель Заславский А.Ю., 2014. – 256 с.

  • Лісяний М.І. Мезенхімальні стовбурові клітини та їх імунні властивості / М.І. Лісяний // Фізіологічний журнал. – 2013. – Т. 59, №3. – С. 126-134.

  • Літовка І.Г. Кісткова тканина в умовах дефіциту навантаження / І.Г. Літовка. – К.: ДП «Інформаційно-аналітичне агенство», 2011. – 243 с.

  • Літовка І.Г. Ремоделювання кісткової тканини у низько- і високоактивних щурів в умовах 45-добової гіпокінезії та впливу дозованої кисневої депривації / І.Г. Літовка // Косм. наука і технологія. – 2003. – Т. 9, №1. – С. 92-95.

  • Літовка І.Г. Ремоделювання кісткової тканини щурів при гіпокінезії різної тривалості / І.Г. Літовка // Укр. мед. альманах. – 2003а. – Т. 6, №2. – С. 171-174.

  • Літовка І.Г. Киснева депривація як ініціатор остеогенезу при гіпокінезії / І.Г. Літовка, О.П. Березовська // Фізіол. журн. – 2003. – Т. 49, №2. – С. 58-65.

  • Лукаш Л.Л. Репрограммирование соматических клеток взрослого человека in vitro / Л.Л. Лукаш, А.П. Яцишина, В.О. Кушнирук, О.В. Пидпала // Фактори експериментальної еволюції організмів. – 2011. – Т. 11. – С. 493-498.

  • Лукьянова Л.Д. Сигнальные механизмы адаптации к гипоксии и их роль в системной регуляции / Л.Д. Лукьянова, Ю.И. Кирова, Г.В. Сукоян // Биологические мембраны. – 2012. – Т. 29, №4. – С. 238-252.

  • Маньковська І.М. Мітохондрії як мішень інтервальної гіпоксії / І.М. Маньковська, Т.В. Серебровська // Фізіол. журн. – 2014. – Т. 60. №6. – С. 75-87.

  • Медик В.А. Статистика в медицине и биологии / В.А. Медик, М.С. Токмачев, Б.Б. Фишман. – М.: Медицина, 2000. – 412 с.

  • Мисюрин А.В. Молекулярный патогенез миелопролиферативных заболеваний / А.В. Мисюрин // Онкогематология. – 2009. – Т. 2, №3. – С. 211-219.

  • Мишуніна Т.М. Механізми, переваги та наслідки активації гліколізу у пухлинних клітинах / Т.М. Мишуніна // Журн. АМН України. – 2009. – Т. 15, №3. – С. 417-447.

  • Молдавер М.В. Влияние кислорода на теломеризованные клетки разного типа, полученные от одного донора / М.В. Молдавер, Э.Б. Дашинимаев, Х.С. Вишнякова, П.М. Чумаков, Е.Е, Егоров // Биол. мембраны. – 2007. –Т. 24. – С. 388-398

  • Мясоедова О.А. Роль сероводорода в реализации физиологических функций организма / О.А. Мясоедова, В.И. Коржов // Журн. НАМН Украины. – 2011. – Т. 17, №3. – С. 191-199.

  • Новицкий В.В. Регуляция апоптоза клеток с использованием газовых трансмиттеров (оксида азота, монооксид углерода и сульфид водорода) / В.В. Новицкий, Н.В. Рязанцева, Е.Г. Старикова, Л.А. Таширева // Вестник науки Сибири. – 2011. – Т. 1, №1. – С. 635-640.

  • Обухов Д.К. Газообразные медиаторы в ЦНС позвоночных животных / Д.К. Обухов, Е.В. Пущина, А.А. Вараксин // Материалы конференций «Успехи современного естествознания». – 2011. – №12. – С. 49-51.

  • Панюхин Н.В. Влияние парциального давления кислорода на выживаемость, пролиферацию и дифференцировку мезенхимальных стволовых клеток из костного мозга мыши / Н.В. Панюхин, Х.С. Вишнякова, Е.Е. Егоров // Биологические мембраны. – 2008. – Т. 25, №5. – С. 352-359.

  • Поляченко Ю.В. Направлена диференціація стовбурових клітин, що виділені з жирової тканини / Ю.В. Поляченко, Е.М. Запольська, Р.В. Салютін // Буковинський медичний вісник. – 2013. – Т. 17, №1. – С. 90-92

  • Пулин А.А. Поверхностные маркеры, характеризующие мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки костного мозга человека / А.А. Пулин, И.Н. Сабурина, В.С. Репин // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. – 2008. – Т. 3, №3. – С. 25-30.

  • Расулов М.Ф. Использование мезенхимальных стволовых клеток костного мозга и эмбриональных фибробластов в лечении ожоговых ран / М.Ф. Расулов // Pacific Medical Journal. – 2004. – №4. – С. 7-9.

  • Резник Н.Л. Третий газ: сульфид водорода как нейротрансмиттер / Н.Л. Резник // Химия и жизнь. – 2009. – T. 10. – C. 24-29.

  • Рылова Ю.В. Пролиферация и метаболический статус мезенхимальных стромальных клеток из жировой ткани при различном содержании кислорода в среде культивирования / Ю.В. Рылова, Е.Р. Андреева, Л.Б. Буравкова // Авиакосмическая и экологическая медицина. – 2010. – Т. 44, №5. – С. 38-41.

  • Рылова Ю.В. Постоянное культивирование мультипотентых мезенхимных стромальных клеток при пониженном содержании кислорода / Ю.В. Рылова, Л.Б. Буравкова // Цитология. – 2013. – №12. – С. 852-859.

  • Сагач В.Ф. Вплив стимуляції та блокади синтезу ендогенного сірководню на функцію серця в умовах ішемії-реперфузії / В.Ф. Сагач, Т.В. Шиманська, Ю.В. Гошовська // Фізіол. журн. –2013. – Т. 59, №4. – С. 8-15.

  • Сагач В.Ф. Фактор, який вивільнюється під час реперфузії ішемізованого серця, може бути маркером відкриття мітохондріальної пори / В.Ф. Сагач, Т.В. Шиманська, С.М. Надточій // Фізіол. журн. – 2003. – Т. 49, №4. – С. 6-12.

  • Сазонтова Т.Г. Роль активных форм кислорода и редокс-сигнализации при адаптации к изменению содержания кислорода / Т.Г. Сазонтова, Н.А. Анчишкина, А.Г. Жукова, И.В. Бедарева, Е.А. Пылаева, Н.А. Кривенцова, А.А. Полянская, А.Р. Юрасов, Ю.В. Архипенко // Фізіол. журн. – 2008. – Т. 54, №2. – С. 18-32.

  • Самойлов В.И. Механизмы социального поведения тканевых клеток позвоночных: культуральные модели / В.И. Самойлов, Ю.М. Васильев // Журнал общей биологии. – 2009. – Т. 70, № 3. – С. 239-244.

  • Северин Е.С. Биохимия: Учеб. для вузов / Е.С. Северин. – М.: ГЭОТАР-МЕД, 2003. – 779 с.

  • Семенихіна О.М. Сірководень пригнічує кальційіндуковане відкривання мітохондріальної пори у серці дорослих і старих щурів / О.М. Семенихіна, Н.А. Струтинська, А.Ю. Будько, Г.Л. Вавілова, В.Ф. Сагач // Фізіол. журн. – 2013. – Т. 59, №2. – С. 9-17.

  • Ситдикова Г.Ф. Сероводород: от канализации Парижа к сигнальной молекуле / Г.Ф. Ситдикова, А.Л. Зефиров // Природа. – 2010. – №9. – С. 29-37.

  • Старикова Е.Г. Роль внутриклеточных газовых трансмиттеров сульфида водорода и оксида азота в регуляции апоптоза нормальных и бласттрансформированных клеток / Е.Г. Старикова, Н.В. Рязанцева, В.В. Новицкий, Л.А. Таширева, Ю.В. Стариков, Е.А. Степовая, И.А. Осихов, О.А. Васильева, В.Д. Якушина // Бюллетень сибирской медицины. – 2011. – № 6. – С. 40-45.

  • Степовая Е.А. Регуляторная роль оксида азота в апоптозе нейтрофилов / Е.А. Степовая, Т.В. Жаворонок, Ю.В. Стариков, В.А. Бычков, Н.Ю. Часовских, Е.Г. Старикова, Г.В. Петина, В.В. Новицкий, Н.В. Рязанцева // Бюл. эксперим. биологии и медицины. – 2008. – Т. 146, № 12. – С. 646-650.

  • Струтинська Н.А. Сірководень пригнічує кальційіндуковане відкривання мітохондріальної пори у серці дорослих і старих щурів / Н.А. Струтинська, О.М. Семенихіна, С.В. Чорна, Г.Л. Вавілова, В.Ф. Сагач // Фізіол. журн. – 2011. – Т. 57, №6. – С. 3-14.

  • Струтинська Н.А. Сірководень пригнічує кальційіндуковане відкривання мітохондріальної пори у серці щурів зі спонтанною гіпертензією / Н.А. Струтинська, Н.О. Дорофеєва, Г.Л. Вавілова, В.Ф. Сагач // Фізіол. журн. – 2013. – Т. 59, №1. – С. 3-10.

  • Суздальцева Ю.Г. «Сравнение способности к дифференцировке мезенхимальных клеток человека, выделенных из разных источников, в ткани мезодермального происхождения» / Ю.Г. Суздальцева, В.В. Бурунова, И.В. Вахрушев, В.Н. Ярыгин, К.Н. Ярыгин // Клеточн. технологии биологии и мед. – 2007. – №1. – С. 3-10.

  • Сукманський А.І. Газотрансмітери – новий вид біорегуляторів / О.І. Сукманський, І.О. Сукманський // Журнал НАМН України. – 2014. – Т. 20, № 2. – С. 153-159.

  • Тимчук Л. Стовбурові клітини. Їх диференціація та принципи взаємодії / Л. Тимчук // Біологія. – 2013. – Т. 715, №7. – С. 10-16.

  • Топчий М.К. Руководство к практическим занятиям по вирусологии / М.К. Топчий, Н.П. Корнюшенко. – К.: Изд-во Киев. ун-та, 1967. – 93 с.

  • Фриденштейн А.Я. Индукция костной ткани и остеогенные клетки-предшественники / А.Я. Фриденштейн, К.С. Лалыкина. – М.: Медицина, 1973. – 223 с.

  • Фриденштейн А.Я. Клеточные основы кроветворного микроокружения / А.Я. Фриденштейн, Е.А. Лурия. – М.: Медицина, 1980. – 214 с.

  • Шиманська Т.В. Вплив сірководню на реакції ізольованого серця щурів при навантаженні об’ємом і ішемії-реперфузії / Т.В. Шиманська, Ю.В. Гошовська, О.М. Семенихіна, В.Ф. Сагач // Фізіол. журн. – 2012. – Т. 58, №6. – С. 57-66.

  • Шипунова И.Н. Мезенхимные стволовые клетки (МСК) и мультипотентные мезенхимные стромальные клетки (ММСК) / И.Н. Шипунова, А.Е. Бигильдеев, О.А. Жиронкина, Н.В. Сац, Н.И. Дризе // Стволовые клетки и регенеративная медицина. IV Всероссийская научная школа-конференция. Москва, 24-27 октября 2011 года. – С. 30-32.

  • Шувалова Н.С. Культивування мезенхімальних стовбурових клітин пуповинного канатика людини при знижених концентраціях кисню / Н.С. Шувалова, О.Г. Дерябіна, С.М. Жукова, М.П. Сорока // Журн. АМН України. – 2010. – Т. 16, додаток. – С. 191.

  • Яцишина А.П. Цитоморфологічна характеристика нової клітинної лінії миші G1 / А.П. Яцишина, О.В. Підпала, Т.П. Рубан, О.В. Тімощук, Л.Л. Лукаш // Цитология и генетика. – 2006. – №3. – С. 49-58.

  • Abe R. Peripheral blood fibrocytes: differentiation pathway and migrationto wound sites / R. Abe, S. Donnelly, T. Peng, R. Bucala, C. Metz // J. Immunol. – 2001. – Vol. 166. – P. 7556-7562.

  • Adhikari S. H2S induced pancreatic acinar cell apoptosis is mediated via Jnk and p38 MAP / S. Adhikari, M. Bhatia // J. Cell. Biol. Med. – 2007. – Vol. 12, №4. – P. 1374-1383.

  • Aggarwal S. Human mesenchymal stem cells modulate allogeneic immune cell responses / S. Aggarwal, M. Pittenger // Blood. – 2005. – Vol. 105. – P. 1815-1820.

  • Amable P. Protein synthesis and secretion in human mesenchymal cells derived from bone marrow, adipose tissue and Wharton's jelly / P. Amable, M. Teixeira, R. Carias, J. Granjeiro, R. Borojevic // Stem Cell Res Ther. – 2014. – Vol. 5, №2. – Р. 53-66.

  • Appelhoff R. Differential function of the prolyl hydroxylases PHD 1, PHD 2 and PHD 3 in the regulation of hypoxia-inducible factor / R. Appelhoff, Y. Tian, R. Raval, H. Turley, A. Harris, C. Pugh, P. Ratcliffe, J. Gleadle // J. Biol. Chem. – 2004. – Vol. 279. – P. 38458-38465.

  • Arnett J. Hypoxia is a major stimulator of osteoclast formation and bone resorption / J. Arnett, D. Gibbons, J. Utting, I. Orriss // J. Cell Physiol. – 2003. – Vol. 196, №1. – Р. 2-8.

  • Baskar R. Hydrogen sulfide-induces DNA damage and change in apoptotic gene expression in human lung fibroblast cells / R. Baskar, L. Li, Р. Moore1 // The FASEB Journal. – 2007. – Vol. 21. – P. 247-255.

  • Bell E. Mitochondrial reactive oxygen species trigger hypoxia-inducible factor-dependent extension of the replicative life span during hypoxia / E. Bell, T. Klimova, J. Eisenbart, P. Schumacker, N. Chandel // Mol Cell Biol. – 2007. – Vol. 27, №16. – Р. 5737-5745.

  • Bhatia M. Hydrogen sulfide as a vasodilator / M. Bhatia // IUBMB Life. – 2005. – Vol. 57, №9. – P. 603-606.

  • Bian J. Role of hydrogen sulfide in the cardioprotection caused by ischemic preconditioning in the rat heart and cardiac myocytes / J. Bian, Q. Yong, T. Pan, Z. Feng, M. Ali, S. Zhou, P. Moore // J. Pharmacol. Exp. Ther. – 2006. – Vol. 316. – P. 670-678.

  • Bianco P. Skeletal stem cells / P. Bianco, PG. Robey // Development. – 2015. – Vol. 142, №6. – Р. 1023-1027.

  • Brohlin M. Characterisation of human mesenchymal stem cells following differentiation into Schwann cell-like cells / M. Brohlin, D. Mahay, L. Novikov, G. Terenghi, M. Wiberg, S. Shawcross, L. Novikiva // Neurosci. Res. – 2009. – Vol. 64. – P. 41-49.

  • Butler A. Induction of the proliferative phenotype in differentiated myogenic cells by hypoxia /A. Butler, M. Eagleton, D. Wang, R. Howell, A. Strauch, V. Khasgiwala, H. Smith // J Biol Chem. – 1991. – Vol. 266, №27. – Р. 18250-18258.

  • Cai J. Membrane properties of rat embryonic multipotent neural stem cells / J. Cai, A. Cheng, Y. Luo, C. Lu, M. Mattson, M. Rao, K. Furukawa // Journal of Neurochemistry. 2004. – Vol. 88. – Р. 212-226.

  • Campagnoli C. Identification of mesenchymal stem/progenitor cells in human first-trimester fetal blood, liver, and bone marrow / C. Campagnoli, I. Roberts, S. Kumar, P. Bennett, I. Bellantuono, N. Fisk // Blood. – 2001. – Vol. 98. – Р. 2396-2402.

  • Cao Y. Mechanism of induction of pancreatic acinar cell apoptosis by hydrogen sulfide / Y. Cao, S. Adhikari, AD. Ang, PK. Moore, M. Bhatia // Am. J. Physiol. Cell Physiol. – 2006. – Vol. 291, №3. – P. 503-C510.

  • Caplan A. Mesenchymal stem cells as trophic mediators / A. Caplan, J. Dennis // J. Cell. Biochem. – 2006. – Vol. 98. – P. 1076-1084.

  • Carroll V. Role hypoxia-inducible factor (HIF)-1α versus HIF-2α in the regulation of HIF target genes in response to hypoxia, insulin-like growth factor-1 or loss of von Hippel-Lindau function: implications for targeting the HIF pathway / V. Carroll, M. Ashcroft // Cancer Res. – 2006. – Vol. 66, №12. – Р. 6264–6270.

  • Carsten A. Hydrogen sulfide: a new gaseous signal molecule and blood pressure regulator / A. Carsten // J. Nephrol. – 2009. – Vol. 22. – P. 173-176.

  • Cechin S. Influence of in vitro and in vivo oxygen modulation on β cell differentiation from human embryonic stem cells / S. Cechin, S. Alvarez-Cubela, J. Giraldo, R. Molano, S. Villate, C. Ricordi, A. Pileggi, L. Inverardi, C. Fraker, J. Domínguez-Bendala // Stem Cells Transl Med. – 2014. – Vol. 3, №3. – Р. 277-289.

  • Chandel N. The cellular basis for diverse responses to oxygen / N. Chandel, G. Budinger // Free Radical Biol. Med. – 2007. – Vol. 42. – Р. 165-174.

  • Chen C. Transplantation of bone marrow stromal cells for peripheral nerve repair / C. Chen, Y. Ou, S. Liao, W. Chen, C. Wu, C. Wang, W. Wang, Y. Huang, S. Hsu // Exp. Neurol. – 2007. –Vol. 204. – Р. 443-453.

  • Chen G. Ligand-еnabled β-C-H arylation of α-amino acids using a simple and practical auxiliary / G. Chen, T. Shigenari, P. Jain, Z. Zhang, Z. Jin, J. He, S. Li, C. Mapelli, MM. Miller, MA. Poss, PM. Scola, KS. Yeung, JQ. Yu // J Am Chem Soc. – 2015. – Vol. 137, №9. – Р. 3338-3351.

  • Chen G. Threonine metabolism and embryonic stem cell self-renewal / G. Chen, J. Wang // Current Opinion in Clinical Nutrition & Metabolic Care. –2014. – Vol. 17, №1. – Р. 80-85.

  • Chen X. Human bone marrow stromal cell cultures conditioned by traumatic brain tissue extracts: growth factor production / X. Chen, M. Katakowski, D. Li, D. Lu, L. Wang, L. Zhang, J. Chen, Y. Xu, S. Gautam, A. Mahmood, M. Chopp // J. Neurosci. Res. – 2002. – Vol. 69. – Р. 687-691.

  • Chen X. Study of in vivo differentiat ion of rat bone marrow stromal cells into schwamm cell-like cells / X. Chen, X.-D. Wang, G. Chen, W.-W. Lin, J. Yao, X.-S. Gu // Microsurgery. – 2006. – Vol. 26. – Р. 111-115.

  • Cheng Y. Hydrogen sulfide induced relaxation of resistance mesenteric artery beds of rats / Y. Cheng, J. Ndisang, G. Tang, K. Cao, R. Wang // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. – 2004. – Vol. 287. – P. 2316-2323.

  • Chesney J. Regulated production of type I collagen and inflammatory cytokines by peripheral blood fibrocytes. / J. Chesney, C. Metz, A. Stavitsky, M. Bacher, R. Bucala // J. Immunol. – 1998. – Vol. 160. – P. 419-425.

  • Chinen Y. Long-term therapeutic efficacy of allogenic bone marrow transplantation in a patient with mucopolysaccharidosis IVA / Y. Chinen, T. Higa, S. Tomatsu, Y. Suzuki, T. Orii, N. Hyakuna // Mol Genet Metab Rep. – 2014. – Vol. 1. – Р. 31-41.

  • Choi Y. Mesenchymal stem cells for cardiac cell therapy / Y. Choi, A. Kurtz, C. Stamm // Hum Gene Ther. – 2011. – Vol. 22, №1. – Р. 3-17.

  • Cockman M. Oxygen sensing / M. Cockman, C. Pugh // Haematologica. – 2005. – Vol. 90. – Р. 8-12.

  • Covas DT. Multipotent mesenchymal stromal cells obtained from diverse human tissues share functional properties and gene-expression profile with CD146+ perivascular cells and fibroblasts / DT. Covas, RA. Panepucci, AM. Fontes, WA Jr. Silva, MD. Orellana, MC. Freitas, L. Neder, AR. Santos, LC. Peres, MC. Jamur, MA. Zago // Exp Hematol. – 2008. – Vol. 36, №5. – Р. 642-654.

  • Dalloul A. Hypoxia and visualization of the stem cell niche / A. Dalloul // Methods Mol Biol. – 2013. – Vol. 1035. – Р. 199-205.

  • D’Andrea A. Erythropoietin receptor. Subunit structure and activation / A. D’Andrea, L. Zon // J. Clin. Invest. – 1990. – Vol. 86. – Р. 681-687.

  • D’Ippolito G. Low oxygen tension inhibits osteogenic differentiation and enhances stemness of human MIAMI cells / G. D’Ippolito, S. Diabira, G. Howard, B. Roos, P. Schiller // Bone. – 2006. – Vol. 39, №3. – Р. 513-522.

  • De Bari C. Multipotent mesenchymal stem cells from adult human synovial membrane / C. De Bari, F. Dell'Accio, P. Tylzanowski, F. Luyten // Arthritis Rheum. – 2001. – Vol. 44. – Р. 1928-1942.

  • Dennis J. Origin and differentiation of human and murine stroma / J. Dennis, P. Charbord // Stem cells. – 2002. – Vol. 20. – Р. 205-214.

  • Dezawa M. Sciatic nerve regeneration in rats induced by transplantation of in vitro differentiated bone-marrow stromal cells / M. Dezawa, I. Takahashi, M. Esaki, M. Takano, H. Sawada // Eur. J. Neurosci. – 2001. – Vol. 14. – Р. 1771-1776.

  • Diaz-Prado S. Multilineage differentiation potential of cells isolated from the human amniotic membrane / S. Díaz-Prado, E. Muiños-López, T. Hermida-Gómez, M. Rendal-Vázquez, I. Fuentes-Boquete, F. de Toro, F. Blanco // J. Cell Biochem. – 2010. – Vol. 111, №4. – Р. 846-857.

  • Ding D. Mesenchymal stem cells / D. Ding, W. Shyu, S. Lin // Cell. Transplant. – 2011. – Vol. 20. – Р. 5-14.

  • Ding F. Use of tissueengineered nerve grafts consisting of a chitosan/poly(lactic-co-glycolic acid)-based scaffold included with bone marrow mesenchymal cells for bridging 50-mm dog sciatic nerve gaps / F. Ding, J. Wu, Y. Yang, W. Hu, Q. Zhu, X. Tang, J. Liu, X. Gu // Tissue. Eng. Part. A. – 2010. – Vol. 16. – Р. 3779-3790.

  • Dodd J. Osteocyte hypoxia: a novel mechanotransduction pathway / J. Dodd, J. Raleigh, T. Gross // Am J Physiol. – 1999. – Vol. 277, №3. – Р. 598-602.

  • Dominici M. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement / M. Dominici, K. Le Blanc, I. Mueller, I. Slaper-Cortenbach, F. Marini, D. Krause, R. Deans, A. Keating, Dj. Prockop, E. Horwitz // Cytotherapy. – 2006. – Vol. 8, №4. – 315-317.

  • Dong Y. Transplantation of neurotrophin-3-transfected bone marrow mesenchymal stem cells for the repair of spinal cord injury / Y. Dong, L. Yang, L. Yang, H. Zhao, C. Zhang, D. Wu // Neural Regen Res. – 2014. – Vol. 9, №16. – Р. 1520-1524.

  • Ebert B. Regulation of the erythropoietin gene / B. Ebert, H. Bunn // Blood. – 1999. – Vol. 94. – Р. 1864-1877.

  • Egusa H. Neuronal differentiation of bone marrow-derived stromal stem cells involves suppression of discordant phenotypes through gene silencing / H. Egusa, F. Schweizer, C. Wang, Y. Matsuka, I. Nishimura // J Biol Chem – 2005. – Vol. 280, №25. – P. 23691-23697.

  • Elsey D. Regulation of cardiovascular cell function by hydrogen sulfide (H(2)S) / D. Elsey, R. Fowkes, G. Baxter // Cell Biochem Funct. – 2010. – Vol. 28, №2. – P. 95-106.

  • Erices A. Mesenchymal progenitor cells in human umbilical cord blood / A. Erices, P. Conget, J. Minguell // Br J Haematol. – 2000. – Vol. 109. – Р. 235-242.

  • Fan C. Characterization and neural differentiation of fetal lung mesenchymal stem cells / C. Fan, F. Tang, Q. Zhang, S. Lu, H. Liu, Z. Zhao, B. Liu, ZB. Han, ZC. Han // Cell Transplant. – 2005. – Vol. 14, №5. – Р. 311-321.

  • Fiorucci S. The emerging roles of hydrogen sulfide in the gastrointestinal tract and liver / S. Fiorucci, E. Distrutti, G. Cirino, J. Wallace // J. Gastroenterol. – 2006. – Vol. 131. – P. 259-271.

  • Fisher J. Erythropoietin production by interstitial cells of hypoxic monkey kidneys / J. Fisher, D. Koury, T. Ducey, S. Mendel // Br J Haematol. – 1996. – Vol. 95, №1. – P. 27-32.

  • Friedenstein A. Bone marrow osteogenic stem cells: in vitro cultivation and transplantation in diffusion chambers / A. Friedenstein, R. Chailakhyan, U. Gerasimov // Cell. Tissue. Kinet. – 1987. – Vol. 20. – P. 263-272.

  • Friedenstein A. Osteogenesis in transplants of bone marrow cells / A. Friedenstein, I. Piatetzky-Shapiro, K. Petrakova // J. Embryol. Exp. Morph. –1966. – Vol. 16, №3. – P. 381-390.

  • Fukuda R. HIF-1 regulates cytochrome oxidase subunits to optimize efficiency of respiration in hypoxic cells / R. Fukuda, H. Zhang, J. Kim, L. Shimoda, C. Dang, G. Semenza // Cell. – 2007. – Vol. 129, №1. – P. 111-122.


    Поділіться з Вашими друзьями:
  • 1   2   3   4   5   6   7   8


    База даних захищена авторським правом ©divovo.in.ua 2017
    звернутися до адміністрації

    войти | регистрация
        Головна сторінка


    загрузить материал